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求设计knockin-bac transgenic的同学帮帮忙
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求设计knockin-bac transgenic的同学帮帮忙# Biology - 生物学
m*5
1
如图,刚做好一个bac recombinnering的plasmid
想同时用tag标记C-terminal,另外因为是最后一个Exon,所以可以用是recapituate
endogenous 3,UTR调控,没有加artificial polyA
现在的问题是,因为种种原因,FRT-Neo-FRT不得不插在如图mCherry和3'UTR中间的位置
麻烦来了
1, 因为Neo selection marker和我的基因是同向的,在FRT-Neo-FRT不删除的情况下,
我的基因是否会用上Neo 的3'UTR(SV40 polyA)
2,哪些方法可以最快地删除Neo?我听说有bacterial表达flipase的,但四处找不到
commercial的
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O*e
2
1. Most likly.
2. 我也没用过Flippase的表达载体。公司买不到,就去找发过类似文章的作者要呗

位置

【在 m******5 的大作中提到】
: 如图,刚做好一个bac recombinnering的plasmid
: 想同时用tag标记C-terminal,另外因为是最后一个Exon,所以可以用是recapituate
: endogenous 3,UTR调控,没有加artificial polyA
: 现在的问题是,因为种种原因,FRT-Neo-FRT不得不插在如图mCherry和3'UTR中间的位置
: 麻烦来了
: 1, 因为Neo selection marker和我的基因是同向的,在FRT-Neo-FRT不删除的情况下,
: 我的基因是否会用上Neo 的3'UTR(SV40 polyA)
: 2,哪些方法可以最快地删除Neo?我听说有bacterial表达flipase的,但四处找不到
: commercial的

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m*5
3
1,most likely yes or no?

【在 O******e 的大作中提到】
: 1. Most likly.
: 2. 我也没用过Flippase的表达载体。公司买不到,就去找发过类似文章的作者要呗
:
: 位置

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O*e
4
yes

【在 m******5 的大作中提到】
: 1,most likely yes or no?
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m*5
5
Flipase表达载体我有,但那要在细胞里共转
我有查到有E.coli自带flipase的,质粒transform进去delection就完成了
正四处找commercial的

【在 O******e 的大作中提到】
: 1. Most likly.
: 2. 我也没用过Flippase的表达载体。公司买不到,就去找发过类似文章的作者要呗
:
: 位置

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s*r
6
马上做一个大肠杆菌的表达construct.
共转大肠杆菌不就行了。

Flipase表达载体我有,但那要在细胞里共转
我有查到有E.coli自带flipase的,质粒transform进去delection就完成了
正四处找commercial的

【在 m******5 的大作中提到】
: Flipase表达载体我有,但那要在细胞里共转
: 我有查到有E.coli自带flipase的,质粒transform进去delection就完成了
: 正四处找commercial的

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m*5
7
that takes time...

【在 s******r 的大作中提到】
: 马上做一个大肠杆菌的表达construct.
: 共转大肠杆菌不就行了。
:
: Flipase表达载体我有,但那要在细胞里共转
: 我有查到有E.coli自带flipase的,质粒transform进去delection就完成了
: 正四处找commercial的

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s*a
8
当时为什么不设计成反向呢

位置

【在 m******5 的大作中提到】
: 如图,刚做好一个bac recombinnering的plasmid
: 想同时用tag标记C-terminal,另外因为是最后一个Exon,所以可以用是recapituate
: endogenous 3,UTR调控,没有加artificial polyA
: 现在的问题是,因为种种原因,FRT-Neo-FRT不得不插在如图mCherry和3'UTR中间的位置
: 麻烦来了
: 1, 因为Neo selection marker和我的基因是同向的,在FRT-Neo-FRT不删除的情况下,
: 我的基因是否会用上Neo 的3'UTR(SV40 polyA)
: 2,哪些方法可以最快地删除Neo?我听说有bacterial表达flipase的,但四处找不到
: commercial的

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a*8
9
In many cases, the NeoR cassette inserts into intron region without concern.
Why people do not think the NeoR poly A would cause truncated form of the
endogenous gene? If you still feel uncomfortable with this, why not try
transfecting into 293 cells and test the expression (using fluorescence, RT-
PCR for 3'UTR or others)? Good luck.
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m*5
10
because they use reversed direction...

【在 a******8 的大作中提到】
: In many cases, the NeoR cassette inserts into intron region without concern.
: Why people do not think the NeoR poly A would cause truncated form of the
: endogenous gene? If you still feel uncomfortable with this, why not try
: transfecting into 293 cells and test the expression (using fluorescence, RT-
: PCR for 3'UTR or others)? Good luck.

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s*r
11
最多一个礼拜,你跟别人要来菌株也差不多时间。

that takes time...

【在 m******5 的大作中提到】
: that takes time...
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a*8
12
Not necessarily.the mRNA splicing from the same genomic locus can be
different when using different promoters. There are many successful examples
when NeoR is in forward direction.

【在 m******5 的大作中提到】
: because they use reversed direction...
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m*5
13
even in my case ? it
is in between of my last exon and 3,utr

【在 a******8 的大作中提到】
: Not necessarily.the mRNA splicing from the same genomic locus can be
: different when using different promoters. There are many successful examples
: when NeoR is in forward direction.

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m*5
14
I actually want to take advantage of the polya downstream of neo in case I
don't want to pursue 3,utr function

【在 s******a 的大作中提到】
: 当时为什么不设计成反向呢
:
: 位置

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m*5
15
而且我手头没有选择标签for co transfection...

【在 s******r 的大作中提到】
: 马上做一个大肠杆菌的表达construct.
: 共转大肠杆菌不就行了。
:
: Flipase表达载体我有,但那要在细胞里共转
: 我有查到有E.coli自带flipase的,质粒transform进去delection就完成了
: 正四处找commercial的

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g*y
16
不是很明白为什么要在bacteria里面删除neo, 难道不用在ES cell里做selection么?
SW105 has an arabinose-inducible flpe gene ,做bac recombineering 的 lab不是
通常都有sw102,105,106系列菌株么?

位置

【在 m******5 的大作中提到】
: 如图,刚做好一个bac recombinnering的plasmid
: 想同时用tag标记C-terminal,另外因为是最后一个Exon,所以可以用是recapituate
: endogenous 3,UTR调控,没有加artificial polyA
: 现在的问题是,因为种种原因,FRT-Neo-FRT不得不插在如图mCherry和3'UTR中间的位置
: 麻烦来了
: 1, 因为Neo selection marker和我的基因是同向的,在FRT-Neo-FRT不删除的情况下,
: 我的基因是否会用上Neo 的3'UTR(SV40 polyA)
: 2,哪些方法可以最快地删除Neo?我听说有bacterial表达flipase的,但四处找不到
: commercial的

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m*5
17
有另外一个marker 筛选

【在 g***y 的大作中提到】
: 不是很明白为什么要在bacteria里面删除neo, 难道不用在ES cell里做selection么?
: SW105 has an arabinose-inducible flpe gene ,做bac recombineering 的 lab不是
: 通常都有sw102,105,106系列菌株么?
:
: 位置

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s*r
18
找找周围的实验室,要个vector。

而且我手头没有选择标签for co transfection...

【在 m******5 的大作中提到】
: 而且我手头没有选择标签for co transfection...
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m*5
19
though it is not directly relevant to my post, I still apreciate that!!thank
you!
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