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请教低浓度蛋白的His-tag purification
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请教低浓度蛋白的His-tag purification# Biology - 生物学
c*e
1
估计这儿有人·明白:有个PBO盒子,装了硬盘,通过SMB传递文件,现在想查看里面硬
盘空间,不想打开连电脑看,有没有办法查看remotely?
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s*a
2
His-tag protein was overexpressed in HEK293 cells.先用IP 纯化,接着做His-
purification变性条件来第二轮纯化(此顺序是实验需要,不要问为什么)。目前结果
是第一轮IP很好,但是His-purification后蛋白都在unbound fraction. 我用的是
Qiagen Ni-NTA Magnetic Agarose bead,据说适合纯化含量比较少的比如mammalian
cell的蛋白。IP后的蛋白都经过 buffer exchange,也没发现有与Ni resin
uncompatible的成分。请帮忙trouble shooting。会不会因为蛋白浓度太低导致与Ni
resin结合不好?His-purification有没有target protein concentration threshold?
是否需要改用binding capacity更大的Qiagen Ni-NTA agarose (不是magnetic bead)?
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a*o
3
不连电脑你用什么看?remote到哪个设备上看?微波炉?

【在 c*******e 的大作中提到】
: 估计这儿有人·明白:有个PBO盒子,装了硬盘,通过SMB传递文件,现在想查看里面硬
: 盘空间,不想打开连电脑看,有没有办法查看remotely?

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b*n
4
可能蛋白的his-tag被包埋在蛋白里面了
如果不需要有活性的蛋白,直接变形了再去结合Ni-NTA
需要有活性的蛋白就要考虑将His-tag放到蛋白的另外一端试试看

【在 s*****a 的大作中提到】
: His-tag protein was overexpressed in HEK293 cells.先用IP 纯化,接着做His-
: purification变性条件来第二轮纯化(此顺序是实验需要,不要问为什么)。目前结果
: 是第一轮IP很好,但是His-purification后蛋白都在unbound fraction. 我用的是
: Qiagen Ni-NTA Magnetic Agarose bead,据说适合纯化含量比较少的比如mammalian
: cell的蛋白。IP后的蛋白都经过 buffer exchange,也没发现有与Ni resin
: uncompatible的成分。请帮忙trouble shooting。会不会因为蛋白浓度太低导致与Ni
: resin结合不好?His-purification有没有target protein concentration threshold?
: 是否需要改用binding capacity更大的Qiagen Ni-NTA agarose (不是magnetic bead)?

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j*r
5
ssh到pbo, df -h, or fdisk

【在 a*o 的大作中提到】
: 不连电脑你用什么看?remote到哪个设备上看?微波炉?
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m*8
6

不做IP能用Ni-NTA拉下来吗?

【在 s*****a 的大作中提到】
: His-tag protein was overexpressed in HEK293 cells.先用IP 纯化,接着做His-
: purification变性条件来第二轮纯化(此顺序是实验需要,不要问为什么)。目前结果
: 是第一轮IP很好,但是His-purification后蛋白都在unbound fraction. 我用的是
: Qiagen Ni-NTA Magnetic Agarose bead,据说适合纯化含量比较少的比如mammalian
: cell的蛋白。IP后的蛋白都经过 buffer exchange,也没发现有与Ni resin
: uncompatible的成分。请帮忙trouble shooting。会不会因为蛋白浓度太低导致与Ni
: resin结合不好?His-purification有没有target protein concentration threshold?
: 是否需要改用binding capacity更大的Qiagen Ni-NTA agarose (不是magnetic bead)?

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a*o
7
你拿什么ssh?不开电脑你能ssh?

【在 j*******r 的大作中提到】
: ssh到pbo, df -h, or fdisk
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s*a
8
忘说了,我就是用变性条件做His-purification的,用8M Urea, 100mM Phosphate,
10mM Tris, pH7.8做binding.
我确定His tag是表达的(based on size and DNA sequencing)。基于很多原因,不想
把 his-tag放到另一端。如果是变性条件,tag就肯定不会被包埋吧?
还有另一个可能,之前IP elution 有用1%SDS,之后做buffer exchange (Milliopore
Centricon)后可能SDS去除不完全。但是最坏可能也就是His-binding时有0.1%左右的
SDS,看Ni-NTA compatible list 应该不会影响binding啊

【在 b******n 的大作中提到】
: 可能蛋白的his-tag被包埋在蛋白里面了
: 如果不需要有活性的蛋白,直接变形了再去结合Ni-NTA
: 需要有活性的蛋白就要考虑将His-tag放到蛋白的另外一端试试看

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e*i
9
cell phone or pad, haha

【在 a*o 的大作中提到】
: 你拿什么ssh?不开电脑你能ssh?
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s*a
10
还没做过这个control。但是不做IP背景会不会太多,导致更难bind?

【在 m*******8 的大作中提到】
:
: 不做IP能用Ni-NTA拉下来吗?

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c*e
11
让你见笑,我的意思是,如何在内网用电脑查看。

【在 a*o 的大作中提到】
: 不连电脑你用什么看?remote到哪个设备上看?微波炉?
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m*8
12

Milliopore
你IP之后用SDS洗脱,会把antibody一起洗下来,这样继续和你的蛋白结合,掩盖
了his tag,这个解释合理否?

【在 s*****a 的大作中提到】
: 忘说了,我就是用变性条件做His-purification的,用8M Urea, 100mM Phosphate,
: 10mM Tris, pH7.8做binding.
: 我确定His tag是表达的(based on size and DNA sequencing)。基于很多原因,不想
: 把 his-tag放到另一端。如果是变性条件,tag就肯定不会被包埋吧?
: 还有另一个可能,之前IP elution 有用1%SDS,之后做buffer exchange (Milliopore
: Centricon)后可能SDS去除不完全。但是最坏可能也就是His-binding时有0.1%左右的
: SDS,看Ni-NTA compatible list 应该不会影响binding啊

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c*e
13
我用个lunix laptop,是不是可用这个试试?

【在 j*******r 的大作中提到】
: ssh到pbo, df -h, or fdisk
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y*y
14
要做的完全一样啊
我现在没用IP直接用Ni纯化之后杂带超多所以打算加一个IP
IP之后准备直接用6Mguanidine洗脱不知道可行性怎么样
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y*y
15
Urea了应该不会再结合了
据说tris会影响Ni结合
再有尿素时间长了pH会变化最好新配

【在 m*******8 的大作中提到】
:
: Milliopore
: 你IP之后用SDS洗脱,会把antibody一起洗下来,这样继续和你的蛋白结合,掩盖
: 了his tag,这个解释合理否?

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m*8
16

有些结合比较强的即使在UREA的环境中还是有结合的,所以最好在IP之前用Ni拉一下,
看到底是his tag本身的问题,还是IP之后的问题。

【在 y****y 的大作中提到】
: Urea了应该不会再结合了
: 据说tris会影响Ni结合
: 再有尿素时间长了pH会变化最好新配

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p*y
17
why use phosphate buffer for His-tag, it will precipitate Ni2+ and your
beads won't bind your His-tag protein anymore
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b*n
18
我们总是用phophate buffer纯化his-tag
没啥问题
phosphate buffer的pH随温度变化没有tris大,也就是pH更稳定

【在 p****y 的大作中提到】
: why use phosphate buffer for His-tag, it will precipitate Ni2+ and your
: beads won't bind your His-tag protein anymore

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b*n
19
你把跟Ni2+ bead结合之后wash的条件也写出来看看

Milliopore

【在 s*****a 的大作中提到】
: 忘说了,我就是用变性条件做His-purification的,用8M Urea, 100mM Phosphate,
: 10mM Tris, pH7.8做binding.
: 我确定His tag是表达的(based on size and DNA sequencing)。基于很多原因,不想
: 把 his-tag放到另一端。如果是变性条件,tag就肯定不会被包埋吧?
: 还有另一个可能,之前IP elution 有用1%SDS,之后做buffer exchange (Milliopore
: Centricon)后可能SDS去除不完全。但是最坏可能也就是His-binding时有0.1%左右的
: SDS,看Ni-NTA compatible list 应该不会影响binding啊

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m*8
20

你蛋白的最后用途是什么?

【在 y****y 的大作中提到】
: 要做的完全一样啊
: 我现在没用IP直接用Ni纯化之后杂带超多所以打算加一个IP
: IP之后准备直接用6Mguanidine洗脱不知道可行性怎么样

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k*l
21
有可能你的蛋白 his-tag 已经被降解掉了
可以做Western看看,但是要注意千分之一的蛋白有tag,western也会有信号,所以要
和另一个 his-tag 蛋白比较一下强度

threshold?
bead)?

【在 s*****a 的大作中提到】
: His-tag protein was overexpressed in HEK293 cells.先用IP 纯化,接着做His-
: purification变性条件来第二轮纯化(此顺序是实验需要,不要问为什么)。目前结果
: 是第一轮IP很好,但是His-purification后蛋白都在unbound fraction. 我用的是
: Qiagen Ni-NTA Magnetic Agarose bead,据说适合纯化含量比较少的比如mammalian
: cell的蛋白。IP后的蛋白都经过 buffer exchange,也没发现有与Ni resin
: uncompatible的成分。请帮忙trouble shooting。会不会因为蛋白浓度太低导致与Ni
: resin结合不好?His-purification有没有target protein concentration threshold?
: 是否需要改用binding capacity更大的Qiagen Ni-NTA agarose (不是magnetic bead)?

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y*y
22
mass

【在 m*******8 的大作中提到】
:
: 你蛋白的最后用途是什么?

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a*n
23
低浓度蛋白的His纯化之前用IP(antibody)浓缩? 在本身就很杂的细胞extract中增加蛋
白不是好的开始,比较routine的办法用离子交换树脂(Ion exchange)浓缩后脱盐再过
His柱,根据结果再继续纯化.前面的步骤不要加任何SDS,SDS不可能靠脱盐就能洗脱的,
会严重干扰后续纯化,最后也很难复性.
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m*8
24

看样子LZ是想找相互作用蛋白,不是想得到纯的蛋白。

【在 a****n 的大作中提到】
: 低浓度蛋白的His纯化之前用IP(antibody)浓缩? 在本身就很杂的细胞extract中增加蛋
: 白不是好的开始,比较routine的办法用离子交换树脂(Ion exchange)浓缩后脱盐再过
: His柱,根据结果再继续纯化.前面的步骤不要加任何SDS,SDS不可能靠脱盐就能洗脱的,
: 会严重干扰后续纯化,最后也很难复性.

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