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请教:QuikChange Mutagenesis PCR of 8 kb plasmid
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请教:QuikChange Mutagenesis PCR of 8 kb plasmid# Biology - 生物学
H*7
1
自费MASTER伤不起啊。找不到工作,公司公司不爱,学校学校木有老板
所谓advisor压根求不上。

伤不起
不行回国了
CSer混成这样。还真是没脸
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z*a
2
【 以下文字转载自 Military 讨论区 】
发信人: wwwhu (fc), 信区: Military
标 题: Re: 北京规定门牌楼牌不得出现“A座B座”字样
发信站: BBS 未名空间站 (Tue Feb 1 14:40:46 2011, 美东)
啥洋玩意?美国这个基督教国家忌讳13吗?哪个城市12街跳到14街的,哪栋楼12层跳到
14层的,甚至哪个教堂11/12号房跳过去14/15号房的?一帮土人忌讳这个避讳那个,顺
便帮洋人忌讳上了。
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C*e
3
rt
有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
是不是8kb太长了?
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f*g
4
CS Master还伤不起啊。
好多专业跳楼算了。
加油吧楼主,希望你早日拿到Offer
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b*a
5
别说,基本上还没见过有13层的电梯
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K*a
6
不长,可以加DMSO。

【在 C*******e 的大作中提到】
: rt
: 有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
: 以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
: 这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
: 试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
: 是不是8kb太长了?

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c*l
7
擦 咱俩不是一个学校的吧。。。
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S*r
8
我们公司的电梯就有13楼。我去过的高层商务楼几乎都有。

【在 b*****a 的大作中提到】
: 别说,基本上还没见过有13层的电梯
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s*y
9
加长反应时间,用更多的产品来做E.coli transformation.

【在 C*******e 的大作中提到】
: rt
: 有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
: 以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
: 这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
: 试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
: 是不是8kb太长了?

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b*y
10
从自己找找原因吧,现在cs的工作挺好找的。跟自费不自费没关系
avatar
s*r
11
我原来做的一次也是,用自己的载体10k怎么做也做不出来,没办法在原来载体上做,
一次就搞定。另外quikChange还有XL的版本吧。
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m*r
12
re,这年头要是学cs再找不到工作那真是白活了

【在 b****y 的大作中提到】
: 从自己找找原因吧,现在cs的工作挺好找的。跟自费不自费没关系
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s*m
13
Try 3min/kb extension time. Worked for >10kb plasmids for me every time.
Also double check your primers...
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s*7
14
我擦,ece自费master才伤不起呢,学了堆shit,然后拼命自学cs的东西,也就为了做
个程序员。。。
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C*e
15
谢谢楼上各位
我有加了和不加DMSO的对照
也有试过10,20,30,40,50ng template/50 ul reaction
引物有用过Strategen protocol上说的完全互补的
也用过Zhang et al, 2004 Nucleic Acid Research上发表的要不完全overlap的
奇怪的是35个循环出了产物但是都跑well都在胶里
降到18个循环就什么都没有了
但还是转录了,完全没有克隆
重新设计引物什么的18个循环倒是有产物了
但是好多非特异带
只胶纯化8kb的那个带,往下做,没有克隆
想问问大家一般引物终浓度用多少?
PCR条件是根据引物用不同的anealing还是统一用SDM protocol里面的55度,
或者Zhang文章里的52度?
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x*i
16
自费master找工作难。。。。
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C*e
17
我没有用kit,就是自己设计引物用那个protocol而已

【在 s********r 的大作中提到】
: 我原来做的一次也是,用自己的载体10k怎么做也做不出来,没办法在原来载体上做,
: 一次就搞定。另外quikChange还有XL的版本吧。

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l*d
18
有MSE的Master伤不起么!!!
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C*e
19
不过如果连条带都没有的话用更多产品来做转化也没用吧。。。。
加长反应时间是说比2 min/kb更长嘛

【在 s******y 的大作中提到】
: 加长反应时间,用更多的产品来做E.coli transformation.
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s*7
20
MSE也自费么?那不是更悲剧

【在 l****d 的大作中提到】
: 有MSE的Master伤不起么!!!
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C*e
21
我会试试用3min/kb
请问你用10kb质粒的时候,50 ul体系用多少模板呢?
引物浓度多少?
谢谢!

【在 s*******m 的大作中提到】
: Try 3min/kb extension time. Worked for >10kb plasmids for me every time.
: Also double check your primers...

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s*y
22
你说老对了
nnd

【在 s*******7 的大作中提到】
: 我擦,ece自费master才伤不起呢,学了堆shit,然后拼命自学cs的东西,也就为了做
: 个程序员。。。

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H*i
23
如果PCR work(如果你不担心突变的话)就没问题。没有条带得话基本不用转化,直接
换方法
我弄过比较难的是一个10kb质粒里面有两段500bp(共2000bp)反向互补,最后中间找
了个酶分开PCR 连起来的。
关于PCR, 引物不要用完全反向互补序列,如果做deletion,保证5'端不会misanealing
(里面有很多问题,具体和高保真酶的外切酶活性有关)
时间和你的酶有关,Q5我最长1min/KB
个人引物设计退火温度都是65往上的(你非特异性条带多,是不是序列中二级结构很多
?)。。
另外有protocol是完全不overlap, 引物磷酸化,最后连接的,我没试过。
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s*7
24
尤其是dsp, image processing, medical imaging..有木有
ic的还好,marvell全给招过去了

【在 s*****y 的大作中提到】
: 你说老对了
: nnd

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s*y
25
是的。比方说3min/kb
另外,我常常连条带都看不见也一样能转化,因为Top10 E.coli 实在是太好用了。
另外,如果实在搞不出来,就不要和QuikChange 继续肉搏,完全可以换成overlapping
PCR 来做mutation。

【在 C*******e 的大作中提到】
: 不过如果连条带都没有的话用更多产品来做转化也没用吧。。。。
: 加长反应时间是说比2 min/kb更长嘛

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x*n
26
弄懂一种语言,然后随便哪个网站放一放,每天都会有人来骚扰你。
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X*n
27
1. Try Top10 cells
2. Use overlap primers, and use Phusion enzyme, add 3 uL DMSO .
3. annealing at 52-58 degree for 5 circles and increase to 58-62 degree for
19 circles.
4. increase you extension time to 16-20mins.
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G*s
28
让非cs的PHD情何以堪
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a*n
29
模板用到250ng试试,跑胶不一定要看到条带,可以直接转化试试

【在 C*******e 的大作中提到】
: 谢谢楼上各位
: 我有加了和不加DMSO的对照
: 也有试过10,20,30,40,50ng template/50 ul reaction
: 引物有用过Strategen protocol上说的完全互补的
: 也用过Zhang et al, 2004 Nucleic Acid Research上发表的要不完全overlap的
: 奇怪的是35个循环出了产物但是都跑well都在胶里
: 降到18个循环就什么都没有了
: 但还是转录了,完全没有克隆
: 重新设计引物什么的18个循环倒是有产物了
: 但是好多非特异带

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a*s
30
你让文科自费master情何以堪。。。

【在 H******7 的大作中提到】
: 自费MASTER伤不起啊。找不到工作,公司公司不爱,学校学校木有老板
: 所谓advisor压根求不上。
: 哎
: 伤不起
: 不行回国了
: CSer混成这样。还真是没脸

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C*e
31
谢谢建议!
我用的PfuUltra
可能也会试试别的polymerase

misanealing

【在 H*******i 的大作中提到】
: 如果PCR work(如果你不担心突变的话)就没问题。没有条带得话基本不用转化,直接
: 换方法
: 我弄过比较难的是一个10kb质粒里面有两段500bp(共2000bp)反向互补,最后中间找
: 了个酶分开PCR 连起来的。
: 关于PCR, 引物不要用完全反向互补序列,如果做deletion,保证5'端不会misanealing
: (里面有很多问题,具体和高保真酶的外切酶活性有关)
: 时间和你的酶有关,Q5我最长1min/KB
: 个人引物设计退火温度都是65往上的(你非特异性条带多,是不是序列中二级结构很多
: ?)。。
: 另外有protocol是完全不overlap, 引物磷酸化,最后连接的,我没试过。

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c*s
32
er
我想自费还自费不起呢 :)
加油!!都这么熬过来的吧
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C*e
33
到不是肉搏,比较麻烦,我其实不是做一个基因的mutation
是某个别人实验室来的homemade质粒,里面的RBS还有RBS到MCS一段不行
要换几个碱基
这个再不行当然也有别的方法
只不过希望不要再重新定引物什么的

overlapping

【在 s******y 的大作中提到】
: 是的。比方说3min/kb
: 另外,我常常连条带都看不见也一样能转化,因为Top10 E.coli 实在是太好用了。
: 另外,如果实在搞不出来,就不要和QuikChange 继续肉搏,完全可以换成overlapping
: PCR 来做mutation。

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c*e
34


【在 m*******r 的大作中提到】
: re,这年头要是学cs再找不到工作那真是白活了
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C*e
35
记下来了!谢谢!
我不能用Top10因为这个质粒本身是Sp resistant的
用的DH5alpha

for

【在 X******n 的大作中提到】
: 1. Try Top10 cells
: 2. Use overlap primers, and use Phusion enzyme, add 3 uL DMSO .
: 3. annealing at 52-58 degree for 5 circles and increase to 58-62 degree for
: 19 circles.
: 4. increase you extension time to 16-20mins.

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C*e
36
没有条带我试过转化了呀,不行啊~

【在 a*****n 的大作中提到】
: 模板用到250ng试试,跑胶不一定要看到条带,可以直接转化试试
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X*n
37
你的plasmid是Sp resistant为什么不能用TOP10?

【在 C*******e 的大作中提到】
: 记下来了!谢谢!
: 我不能用Top10因为这个质粒本身是Sp resistant的
: 用的DH5alpha
:
: for

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s*y
38
DH5alpha效率太低了。
什么是Sp resistant?

【在 C*******e 的大作中提到】
: 记下来了!谢谢!
: 我不能用Top10因为这个质粒本身是Sp resistant的
: 用的DH5alpha
:
: for

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C*e
39
好吧,我话没说全,我的质粒是Spec/Strep resistant的
所以不能用TOP10,which is Strep resistant的
实验室有人试过光用Spec筛
都是假阳性

【在 X******n 的大作中提到】
: 你的plasmid是Sp resistant为什么不能用TOP10?
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C*e
40
Spectinomycin resistant

【在 s******y 的大作中提到】
: DH5alpha效率太低了。
: 什么是Sp resistant?

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z*8
41

PfuUltra not good. Try phusion and use MAX competent cells from NEB.
Check the GC content of your primer.

【在 C*******e 的大作中提到】
: 谢谢建议!
: 我用的PfuUltra
: 可能也会试试别的polymerase
:
: misanealing

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s*y
42
哦。这样的啊。
另外,实在不行的话,你还是改用overlapping PCR吧。随便从vector 上找两个single
restriction site把你要改的地方包含在里面,然后用overlapping PCR把相关片段给
P出来,然后替换进去就可以了。

【在 C*******e 的大作中提到】
: Spectinomycin resistant
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H*i
43
1.建议换酶(PCR不work这个我觉得比试条件有效),相对phusion PCR困难模板个人喜
欢Q5,在一些primer靠近terminator的情况,我遇到phusion不work但是Q5(NEB说Q5突
变率低,但我觉得Q5似乎突变率高点,不知道是不是错觉)没问题的情况。
2.spec单独为什么假阳性,这抗性我经常用,不理解。。。
3.comp. cell效率我觉得主要还是和制作方法有关吧,转提纯的质粒做测试得话,我用
TSS转 MG1655 BW25113 DH10B(TOP10是商品名吧) XL1blue 没有观察到特别显著区别
(小于一个数量级),当然做克隆或者PCR产物肯定有些区别。 单个人觉得做克隆效率
10^7-10^8足够了,更高的效率如果长出来几个,很可能是残留模板之类的。另外胶上
看不见确实可以接着做,不过大多情况是费时费力(转化鉴定基本要1.5天),所以我
如果觉得PCR完全没东西,基本就换方法了。
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a*a
44
我都是很挫的subclone到ta载体里做的。慢么是要慢点,不过心情好呀。

【在 C*******e 的大作中提到】
: rt
: 有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
: 以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
: 这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
: 试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
: 是不是8kb太长了?

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b*r
45
8K不算大,12K的质粒经常做,做了无数点突变,很少有做不出来的。做不出来的话,
基本都是酶的问题,不是所有的酶都适合做QC,phusion保真性很好,QC很少能做出来。
我们用的是Vent,很少有做不出来的,还有就是需要家6-8%的DMSO。循环数18-20足够
了,多了也没用。PCR完了之后酶切,直接转化。

【在 H*******i 的大作中提到】
: 1.建议换酶(PCR不work这个我觉得比试条件有效),相对phusion PCR困难模板个人喜
: 欢Q5,在一些primer靠近terminator的情况,我遇到phusion不work但是Q5(NEB说Q5突
: 变率低,但我觉得Q5似乎突变率高点,不知道是不是错觉)没问题的情况。
: 2.spec单独为什么假阳性,这抗性我经常用,不理解。。。
: 3.comp. cell效率我觉得主要还是和制作方法有关吧,转提纯的质粒做测试得话,我用
: TSS转 MG1655 BW25113 DH10B(TOP10是商品名吧) XL1blue 没有观察到特别显著区别
: (小于一个数量级),当然做克隆或者PCR产物肯定有些区别。 单个人觉得做克隆效率
: 10^7-10^8足够了,更高的效率如果长出来几个,很可能是残留模板之类的。另外胶上
: 看不见确实可以接着做,不过大多情况是费时费力(转化鉴定基本要1.5天),所以我
: 如果觉得PCR完全没东西,基本就换方法了。

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U*l
46
经常用,但从来不会一次换6个碱基,通常只换2个到顶。
当然也看你6个mutation是在一起还是分开的。

【在 C*******e 的大作中提到】
: rt
: 有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
: 以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
: 这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
: 试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
: 是不是8kb太长了?

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X*n
47
6个一起没问题。我也经常用Sp抗性的质粒转top 10,没问题.
8kb一下的pcr突变或deletion,107左右的转化效率足够了,如果是8kb以上的,我通常
都用108-109以上转化效率的细胞。
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C*e
48
2.spec单独为什么假阳性,这抗性我经常用,不理解。。。
-——不知道是不是case by case
我说的用spec在TOP10(Strp R)里筛本身是spec/strp resistant的质粒
至少我同事的情况是假阳性,spec抗性本身可以由单突变引起啊
我这里已经有很多因素需要trouble shooting,所以回避TOP10也算合理吧
如果是已经构建好的Spec质粒,往TOP10里subclone那是另一说

【在 H*******i 的大作中提到】
: 1.建议换酶(PCR不work这个我觉得比试条件有效),相对phusion PCR困难模板个人喜
: 欢Q5,在一些primer靠近terminator的情况,我遇到phusion不work但是Q5(NEB说Q5突
: 变率低,但我觉得Q5似乎突变率高点,不知道是不是错觉)没问题的情况。
: 2.spec单独为什么假阳性,这抗性我经常用,不理解。。。
: 3.comp. cell效率我觉得主要还是和制作方法有关吧,转提纯的质粒做测试得话,我用
: TSS转 MG1655 BW25113 DH10B(TOP10是商品名吧) XL1blue 没有观察到特别显著区别
: (小于一个数量级),当然做克隆或者PCR产物肯定有些区别。 单个人觉得做克隆效率
: 10^7-10^8足够了,更高的效率如果长出来几个,很可能是残留模板之类的。另外胶上
: 看不见确实可以接着做,不过大多情况是费时费力(转化鉴定基本要1.5天),所以我
: 如果觉得PCR完全没东西,基本就换方法了。

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C*e
49
我不是做某个基因的突变
这个subclone,还有sunnyday说的overlapping PCR然后再ligate当然也是可以
另外还有些别的方法绕开
不过都多很多步骤
(在我目前情况下)不是首选
我已经有一批8个同样backbone的质粒,
一个wt,7个mutants,
每一个都是双基因的Dicistronic expression
现在要改变RBS区域的东西
如果QuikChange可行,很快8个就都换好了
不然要从原先的backbone开始折腾起
再重新克隆
虽然我也已经试过用原先没有insert的vector做QuikChange,
也有问题

【在 a*******a 的大作中提到】
: 我都是很挫的subclone到ta载体里做的。慢么是要慢点,不过心情好呀。
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C*e
50
非常感谢大家的讨论和建议!
有进展我会来报告的!
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u*1
51
我正好在做这个,8kb的plasmid,用Pfu貌似没问题,PCR出一堆smear,然后digestion
,transformation
但我接着这里也有俩问题:
1. 从板子上挑选不同的colony摇菌,提质粒,测序,发现有的成功引入突变,有的没
有引入突变,有的甚至出现其他地方(不应该出现的)什么deletion之类的。。
这如何解释呢
2. 8kb的target of interest大概是2.5kb;我现在是设计10对引物覆盖这2.5kb,等于
把整个2.5kb都测一下。。。需要这么做吗?因为虽然大家说Pfu很高保真,但我依然害
怕引入其他的乱七八糟的东西,毕竟PCR的产物是一堆smear。。。其实我都好奇这种
long-range PCR到底发生了什么。。。

【在 C*******e 的大作中提到】
: rt
: 有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
: 以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
: 这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
: 试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
: 是不是8kb太长了?

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C*S
52
1:没什么解释,就是pcr或者transform的时候突变了。
2:我这儿测序,精确度能到800到1000bp,所以2.5k三个primer就覆盖了。涉及到PCR
的克隆,测序还是需要的,不一定哪里就产生一个突变。

digestion

【在 u*********1 的大作中提到】
: 我正好在做这个,8kb的plasmid,用Pfu貌似没问题,PCR出一堆smear,然后digestion
: ,transformation
: 但我接着这里也有俩问题:
: 1. 从板子上挑选不同的colony摇菌,提质粒,测序,发现有的成功引入突变,有的没
: 有引入突变,有的甚至出现其他地方(不应该出现的)什么deletion之类的。。
: 这如何解释呢
: 2. 8kb的target of interest大概是2.5kb;我现在是设计10对引物覆盖这2.5kb,等于
: 把整个2.5kb都测一下。。。需要这么做吗?因为虽然大家说Pfu很高保真,但我依然害
: 怕引入其他的乱七八糟的东西,毕竟PCR的产物是一堆smear。。。其实我都好奇这种
: long-range PCR到底发生了什么。。。

avatar
H*i
53
1.没有突变有两种可能,一种是dpn1处理不完全,第二(某些设计中)如果你的引物5
’可以匹配一段序列,但是3'是突变,那么似乎高保真酶可以把3’切掉,完成PCR,另
外从smear可以看出,你PCR进行得并不好,如果目标片段之中有什么重复序列相似序列
,出现deletion也是很可能的。 我见到smear最多的就是multimer,如果你引物设计如
果做得和cpec最后一步一样,smear可能性非常高
2.pfu按照NEB说法只有6x的保真性,所以肯定要测序(尤其是引物部分,2.5K用不了10
对引物),克隆做多了 phusion Q5突变都是一堆一堆的。

digestion

【在 u*********1 的大作中提到】
: 我正好在做这个,8kb的plasmid,用Pfu貌似没问题,PCR出一堆smear,然后digestion
: ,transformation
: 但我接着这里也有俩问题:
: 1. 从板子上挑选不同的colony摇菌,提质粒,测序,发现有的成功引入突变,有的没
: 有引入突变,有的甚至出现其他地方(不应该出现的)什么deletion之类的。。
: 这如何解释呢
: 2. 8kb的target of interest大概是2.5kb;我现在是设计10对引物覆盖这2.5kb,等于
: 把整个2.5kb都测一下。。。需要这么做吗?因为虽然大家说Pfu很高保真,但我依然害
: 怕引入其他的乱七八糟的东西,毕竟PCR的产物是一堆smear。。。其实我都好奇这种
: long-range PCR到底发生了什么。。。

avatar
m*u
54
try some other Taq, like KOD Extreme
avatar
h*s
55
我觉得这是正解。
延长到3min/kb以上。
如果还是出不来,换其他方法更快拿到construct为妙。

overlapping

【在 s******y 的大作中提到】
: 是的。比方说3min/kb
: 另外,我常常连条带都看不见也一样能转化,因为Top10 E.coli 实在是太好用了。
: 另外,如果实在搞不出来,就不要和QuikChange 继续肉搏,完全可以换成overlapping
: PCR 来做mutation。

avatar
k*l
56
可以只P一段,然后酶切,连接
也可以直接合成

【在 C*******e 的大作中提到】
: rt
: 有没有人用QuikChange Mutagenesis PCR protocol做过8 kb plasmid?
: 以前小质粒,4、5 kb的都没什么问题,换碱基、插入、去除什么都行
: 这次一个8kb的,一共只要替换6个碱基,怎么做都出不来条带
: 试过优化条件,不同模板浓度,不同PCR条件,加reagent去除2级结构什么的
: 是不是8kb太长了?

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